tryptamine/arabidopsis thaliana

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Inhibition of dimethylnitrosamine-induced mutagenesis in Arabidopsis thaliana by diethyldithiocarbamate and carbon monoxide.

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Diethyldithiocarbamate and carbon monoxide markedly inhibited the frequency of embryonic and chlorophyll mutations induced by the metabolism-requiring mutagen dimethylnitrosamine in the higher plant Arabidopsis thaliana. In contrast, the monoamine oxidase substrates, tryptamine, benzylamine and

Auxin biosynthesis in pea: characterization of the tryptamine pathway.

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One pathway leading to the bioactive auxin, indole-3-acetic acid (IAA), is known as the tryptamine pathway, which is suggested to proceed in the sequence: tryptophan (Trp), tryptamine, N-hydroxytryptamine, indole-3-acetaldoxime, indole-3-acetaldehyde (IAAld), IAA. Recently, this pathway has been

Reassessing the role of N-hydroxytryptamine in auxin biosynthesis.

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The tryptamine pathway is one of five proposed pathways for the biosynthesis of indole-3-acetic acid (IAA), the primary auxin in plants. The enzymes AtYUC1 (Arabidopsis thaliana), FZY (Solanum lycopersicum), and ZmYUC (Zea mays) are reported to catalyze the conversion of tryptamine to

The Thiol Reductase Activity of YUCCA6 Mediates Delayed Leaf Senescence by Regulating Genes Involved in Auxin Redistribution.

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Auxin, a phytohormone that affects almost every aspect of plant growth and development, is biosynthesized from tryptophan via the tryptamine, indole-3-acetamide, indole-3-pyruvic acid, and indole-3-acetaldoxime pathways. YUCCAs (YUCs), flavin monooxygenase enzymes, catalyze the conversion of

vanishing tassel2 encodes a grass-specific tryptophan aminotransferase required for vegetative and reproductive development in maize.

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Auxin plays a fundamental role in organogenesis in plants. Multiple pathways for auxin biosynthesis have been proposed, but none of the predicted pathways are completely understood. Here, we report the positional cloning and characterization of the vanishing tassel2 (vt2) gene of maize (Zea mays).

Sugar levels regulate tryptophan-dependent auxin biosynthesis in developing maize kernels.

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The maize (Zea mays) Miniature1 (Mn1) locus encodes the cell wall invertase INCW2, which is localized predominantly in the basal endosperm transfer layer of developing kernels and catalyzes the conversion of sucrose into glucose and fructose. Mutations in Mn1 result in pleiotropic changes, including

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